細胞換液、傳代及凍存

用10％胎牛 DMEM培養液，37℃ 下置于5％CO₂培養箱中。待細胞融合至80％，用0．25％胰酶消化傳代后接種(細胞密度5 XlO⁴)于培養瓶或孔板，待細胞融合至約70％后用于實驗。

細胞株培養方法如下： 

1.貼壁細胞換液：

1）吸光培養瓶中的培養液。

2）用1xD-hank`s洗一次。

3）加入適量的新鮮培養液，接種于新的培養瓶內，放入培養箱內培養。

2.懸浮細胞換液

1)吸光培養瓶中的培養液放入15ml離心管中離心1500rpm 5min。

2)細胞沉淀用1xD-hank`s洗一次。

3)加入適量的新鮮培養液，接種于新的培養瓶內，放入培養箱內培養。

3.細胞傳代（貼壁細胞傳代采用胰酶消化法，常用消化液為0.25%的胰蛋白液）

1）吸光培養瓶中的培養液。

2）用1xD-hank`s洗一次。

3）加入0.5ml-1ml 0.25%的胰蛋白酶液（以消化液能覆蓋整個瓶底為準）。

4）靜止2-10分鐘（顯微鏡下動態監測）。

5）吸去胰蛋白酶液，加入培養基。

6）用吸管吸取瓶內培養液，反復吹打瓶壁細胞，形成細胞懸液。

7）吸取1/5-1/10細胞懸液接種于新的培養瓶內。

8）加入適量的新鮮培養液，接種于新的培養瓶內，放入培養箱內培養。

4.細胞凍存：

1）預先配制凍存液：90%胎牛血清+10%DMSO

2）取對數期生長細胞經胰酶消化后加入培養液終止胰酶反應，離心（1500rpm 5min）去上清留沉淀加適量凍存液，用吸管吸打制成細胞懸液（1 XlO⁵-5X10⁶/ml)

3）加入1ml細胞懸液于凍存管中，密封后標記凍存細胞名稱和凍存日期。

5.細胞復蘇：

1）從液氮中取出凍存管，迅速投入37度-38度水浴中

2）使其融化5min內用培養液稀釋至原液體的10倍以上，低速離心1500rpm 5min

3）去上清，加入培養液，細胞轉入培養器皿中進行培養